| 二、纳米技术在克隆技术中的应用 | |
| 三、在基因工程中的应用——多肽疫苗及其佐剂 | |
第五节 其它方面的应用 |
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| 一、细胞分离 | |
| 二、细胞内部染色 | |
第七章 纳米中药 |
|
第一节 纳米中药概念及其产生的背景 |
市 |
第二节 纳米中药的特点与应用 |
场 |
| 一、纳米中药的特点 | 调 |
| 二、纳米技术在中药中的应用 | 研 |
| 三、纳米中药前景展望 | 网 |
第八章 纳米生物技术前沿 |
【 |
第一节 概况 |
２ |
| 阅读全文：https://www.20087.com/2008-11/R_2008namishengwujishuchanyeshichangyaBaoGao.html | |
第二节 纳米分子仿生学 |
０ |
| 一、模拟酶机器人 | ０ |
| 二、生物导弹机器人 | ８ |
| 三、模仿叶绿体、线粒体机器人 | ７ |
| 四、基因修复机器人 | ． |
| 五、“分子伴侣”机器人 | ｃ |
第三节 纳米生物芯片的研究进展 |
ｏ |
| 一、传统的生物芯片与纳米生物芯片的比较 | ｍ |
| 二、蛋白质芯片的发展 | 】 |
| 三、基因芯片的发展 | 电 |
第九章 纳米生物技术产业投资建议 |
话 |
第一节 纳米生物技术行业投资机会及风险 |
： |
第二节 中⋅智⋅林⋅纳米生物技术行业投资建议 |
４ |
| 附 表 | ０ |
| 表1.1 纳米技术发展史 | ０ |
| 表3.1 超微颗粒表面原子百分数与颗粒直径的关系 | ６ |
| 表4.1 载药量方差分析表 | １ |
| 表4.2 粒径大小方差分析表 | ２ |
| 表4.3 包封率方差分析表 | ８ |
| 表4.4 不同温度制备的微球洗涤后进入溶液的游离阿霉素百分率 | ６ |
| 表4.5 不同药物浓度下对HepG2细胞的影响（A值±s） | ６ |
| 表4.6 不同药物浓度下的HepG2细胞抑制率（IR） | ８ |
| 表4.7 各组的半数抑制剂量 | 市 |
| 表4.8 各组光密度值均值 | 场 |
| 表4.9 各组transwell法结果 | 调 |
| 表4.10 各种不同用药和不同给药剂量的肝功能指标的变化 | 研 |
| 2008 nano - biotechnology industry market research and development forecasts | |
| 表4.11 各种不同用药和不同给药剂量的肾功能和心肌酶学指标的变化 | 网 |
| 表4.12 各种不同用药和不同剂量给药对WBC、Hb、RBC、PLT、LYM%引起的改变 | 【 |
| 表4.13 各种不同用药和不同剂量给药对LYM、GRAN、MONO、RDW-SD、PDW、MPV引起的变化 | ２ |
| 表4.14 阿霉素与半乳糖化磁性白蛋白阿霉素纳米粒的药代动力学参数 | ０ |
| 表4.15 舌静脉注射FADM、MADM、Gal29-ADM后在A、B、C、D组大鼠肝组织中的浓度（μg/g）（ ） | ０ |
| 表4.16 给药后不同时间B、C组药物对肝及D组药物对靶肝的DTI和DSI数据 | ８ |
| 表4.17 舌静脉注射FADM、MADM、Gal29-ADM后在A、B、C、D组大鼠体内血浆（μg/ml）及心、肾、脾、肺组织中的浓度（μg/g）（ ） | ７ |
| 表4.18 各脏器γ计数（每克湿重组织的cpm） | ． |
| 表4.19 各脏器放射总量占注射总量的百分比（%） | ｃ |
| 表4.20 肝组织γ计数（每克湿重组织的cpm） | ｏ |
| 附 图 | ｍ |
| 图1.1 阿霉素白蛋白磁纳米粒的扫描电镜照片 | 】 |
| 图1.2 阿霉素白蛋白磁纳米粒的透射电镜照片磁性物质（Fe3O4）均匀分布于纳米粒中 | 电 |
| 图1.3 阿霉素白蛋白磁纳米粒在磁场的作用下聚集于磁铁的一侧 | 话 |
| 图1.4 阿霉素白蛋白胜纳米粒因磁化而相互吸引，沿磁力线的方向形成串珠状聚集 | ： |
| 图1.5 阿霉素白蛋白磁纳米粒在运动过程中照相所形成的轨迹 | ４ |
| 图1.6 未加磁场，肝动脉注射阿霉素白蛋白磁纳米粒30min后，肿瘤组织中可见少量散在的纳米粒存在 | ０ |
| 图1.7 加磁场，肝动脉注射阿霉素白蛋白磁纳米粒30min后，肿瘤组织的小血管中可见大量纳米粒聚积 | ０ |
| 图1.8 加磁场，肝动脉注射阿霉素白蛋白磁纳米粒30min后，肿瘤组织的小动脉中可见大量纳米粒聚积 | ６ |
| 图1.9 不加磁场，肝动脉注射阿霉素白蛋白磁纳米粒36h后，肿瘤组织片状坏死，瘤周可见淋巴细胞浸润 | １ |
| 图1.10 加磁场，肝动脉注射阿霉素白蛋白磁纳米粒36h后，肿瘤组织除边缘少许细胞存活，其余部位肿瘤组织全部坏死 | ２ |
| 图1.11 加磁场，肝动脉注射阿霉素白蛋白磁纳米粒60d后，肿瘤组织被纤维组织和无结构的组织所代替，找不到癌细胞的存在 | ８ |
| 图1.12 未加磁场，肝动脉注射阿霉素白蛋白磁纳米粒30min后，在正常肝组织的血管中未发现纳米粒的存在 | ６ |
| 图1.13 加磁场，肝动脉注射阿霉素白蛋白磁纳米粒30min后，正常肝组织的小动脉及肝窦中有大量的纳米粒聚积 | ６ |
| 图1.14 以纳米为载体转染 | ８ |
| 图1.15 以脂质体为载体转染 | 市 |
| 2008年中國納米生物技術產業市場研究與發展預測 | |
| 图1.16 纳米级赖氨酸、葡萄糖聚合物 | 场 |
| 图1.17 兔骨髓细胞在氨基酸聚合物纳米材料中培养4h后，生长良好 | 调 |
| 图1.18 兔骨髓细胞在氨基酸聚合物纳米材料中培养7d后，生长正常 | 研 |
| 图1.19 鼠骨髓细胞在氨基酸纳米材料中培养7d后检测到碱性磷酸酶活性（深色点为碱性磷酸酶活性标记） | 网 |
| 图1.20 检测到I型胶原蛋白（Sirius Red F3B染色） | 【 |
| 图1.21 I型胶原蛋白表达（Western blotting test）（S为氨基酸纳米材料，P为组织培养液） | ２ |
| 图1.22 鼠骨髓细胞在氨基酸聚合物纳米材料中培养30d后，组织相容性良好，无炎性和排斥反应，培养60d后有明显骨痂形成。CT为结缔组织，P为纳米材料 | ０ |
| 图1.23 鼠骨髓细胞在氨基酸聚合物纳米材料中培养60d后有明显骨痂形成。CT为结缔组织，P为纳米材料 | ０ |
| 图1.24 在聚乳酸（polyloctide，PLA）/聚己醇酸（polyglycolid，PGA）内培养引起的肥大细胞反应（CT为结缔组织，P为纳米材料，G为肥大细胞） | ８ |
| 图1.25碳纳米管基因芯片原理图 | ７ |
| 图1.26 纳米无创注射器 | ． |
| 图1.27 纳米多功能检测仪 | ｃ |
| 图1.28 传统检测需要多种设备 | ｏ |
| 图1.29 纳米DNA诊断实时检测仪 | ｍ |
| 图1.30 具有自塑能力的可吸收注射型纳米骨浆 | 】 |
| 图1.31 骨浆临床使用前的准备 | 电 |
| 图1.32 带有骨浆的远端桡骨骨折在骨折处膨大，骨折处无塌陷，愈合完好 | 话 |
| 图1.33 重建髋臼窝的骨浆增加 | ： |
| 图2.1 原子力显微镜的工作原理 | ４ |
| 图2.2 扫描隧道显徽镜的基本原理图 | ０ |
| 图4.1 粒径图 | ０ |
| 图4.2 载药纳米粒电镜图（×17000倍） | ６ |
| 图4.3 阿霉素及载药纳米粒体外释放曲线 | １ |
| 图4.4 RPMI-1640对照组 | ２ |
| 图4.5 单纯ADM组 | ８ |
| 图4.6 MADM+M组 | ６ |
| 2008 nián zhōngguó nàmǐ shēngwù jìshù chǎnyè shìchǎng yánjiū yǔ fāzhǎn yùcè | |
| 图4.7 Gal-ADM组 | ６ |
| 图4.8 Gal+MADM+M组 | ８ |
| 图4.9 内质网、线粒体肿大 | 市 |
| 图4.10 细胞核固缩成不均匀块状结构 | 场 |
| 图4.11 异染色体边集 | 调 |
| 图4.12 肿大内质网扩张呈空泡状 | 研 |
| 图4.13 应用药物24h后电泳结果 | 网 |
| 图4.14 应用药物48h后电泳结果 | 【 |
| 图4.15 各组不同药物浓度下的HepG2细胞抑制率 | ２ |
| 图4.16 不同组RT-PCR检测CB mRNA差异表达 | ０ |
| 图4.17 给AGMAN剂量为600mg/kg，肝、肺、心肌出现广泛严重淤血，左心房有血液淤积（如→所指）。 | ０ |
| 图4.18 H组给药后急性死亡动物：心肌充血，心肌细胞肿胀，部分核融解（→示） | ８ |
| 图4.19 H组给药后急性死亡动物：肺淤血，肺泡内有红细胞渗入 | ７ |
| 图4.20 E组未死亡的大鼠病检：可见心脏成向心性肥厚，光学镜检下可见心肌细胞肿胀，可见脂肪空泡形成，细胞核结构混乱，可见核浓缩核核碎裂及其核融解 | ． |
| 图4.21 G组动物肝病检：光学显微镜下可见细胞水肿和脂肪变性（→示）（40×10） | ｃ |
| 图4.22 AGMAN剂量为522mg/kg组（接近LD50），14d内未死亡动物解剖大体标本。肝未见淤血表现；肺有少许淤血和灶性气肿改变 | ｏ |
| 图4.23 F组给药22h后死亡的动物电镜检查显示：细胞核中有多个圆形的纳米粒存在。同时可以看到核仁出现浓缩和变形 | ｍ |
| 图4.24 F组给药22h后死亡的动物电镜检查显示：细胞质中有数个圆形的纳米粒存在。同时可以看到细胞内出现脂肪空泡 | 】 |
| 图4.25 不同pH值条件下CTAB-PBCA-NP与DNA的结合情况 | 电 |
| 图4.26 CTAB-PBCA-NP与DNA结合的凝胶阻滞实验 | 话 |
| 图4.27 CTAB-PBCA-NP与DNA的结合效率评价 | ： |
| 图4.28 CTAB-PBCA-NP/DNA经DNaseI及血清消化后的DNA电泳图谱 | ４ |
| 图4.29 CTAB-PBCA-NP/DNA经超声剪切作用后的DNA电泳图谱 | ０ |
| 图4.30 EGFP-N1在CTAB-PBCA-NP（A，C）转染及SuperFect Transfection Reagent转染（B，D）的HepG2（A，B）及3T3（C，D）细胞中的表达（200×）。 | ０ |
| 图5.1 传感器微阵上的神经细胞 | ６ |
| 图5.2 向生物传感器注入神经细胞 | １ |
| 2008ナノバイオテクノロジー産業の市場調査と開発の予測 | |
| 图6.1 果蝇多支染色体局部细节的AFM图像 | ２ |
| 图6.2 Xe原子排列的IBM字样 | ８ |
| 图6.3 用101个Fe原子写下“原子”二个迄今为止最小的汉字 | ６ |
| 图7.1 服用传统雄黄粉末50mg后家兔72h药时曲线 | ６ |
| 图7.2 服用纳米雄黄粉体50mg后家兔72h药时曲线 | ８ |
| 图7.3 不同状态石决明血锌浓度变化 | 市 |
| 图7.4 不同状态石决明血硅浓度变化 | 场 |
| 图7.5 不同状态石决明血钙浓度变化 | 调 |
| 图7.6 单体聚合成纳米粒的过程 | 研 |
| 图8.1 传统的生物芯片 | 网 |
| 图8.2 纳米生物芯片 | 【 |
| 图8.3 多元蛋白质芯片模型 | ２ |
| 图8.4 研究蛋白相互作用的芯片Protein G、p50和FRB等三种蛋白质分别以点状微阵固定到玻片上 | ０ |
| 图8.5 基因表达的微阵图 | ０ |
略……
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